簡(jiǎn)要描述:活性氧(Reactive oxygen species, ROS)包括超氧自由基、過(guò)氧化氫、及其下游產(chǎn)物過(guò)氧化物和羥化物等,參與細胞生長(cháng)增殖、發(fā)育分化、衰老和凋亡以及許多生理和病理過(guò)程。
產(chǎn)品分類(lèi)
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品牌 | Life-iLab/李記生物 | 貨號 | AC12L925 |
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規格 | 100T | 供貨周期 | 現貨 |
應用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
產(chǎn)品描述
活性氧(ROS)檢測試劑盒包括超氧自由基、過(guò)氧化氫、及其下游產(chǎn)物過(guò)氧化物和羥化物等,參與細胞生長(cháng)增殖、發(fā)育分化、衰老和凋亡以及許多生理和病理過(guò)程。李記生物的活性氧檢測試劑盒(Meilun Reactive Oxygen Species Assay Kit)是一種基于熒光染料DCFH-DA (2,7-Dichlorodi-hydrofluorescein diacetate) 的熒光強度變化,定量檢測細胞內活性氧水平的常用方法。
DCFH-DA本身沒(méi)有熒光,可以自由穿過(guò)細胞膜,進(jìn)入細胞內后,可以被細胞內的酯酶水解生成DCFH。而DCFH不能通透細胞膜,從而使探針很容易被標記到細胞內。在活性氧存在的條件下,DCFH被氧化生成熒光物質(zhì)DCF,綠色熒光強度與細胞內活性氧水平成正比,檢測DCF的熒光就可以知道細胞內活性氧的水平。在激發(fā)波長(cháng)502 nm,發(fā)射波長(cháng)530 nm附近,使用熒光顯微鏡、激光共聚焦顯微鏡、熒光分光光度計、熒光酶標儀、流式細胞儀等檢測DCF熒光,從而測定細胞內活性氧水平。
本試劑盒背景低、靈敏度高、線(xiàn)性范圍寬、使用方便,可用于各種真核培養細胞的檢測,且提供了活性氧陽(yáng)性對照試劑Rosup,便于活性氧的檢測。以96孔板每孔加樣量為標準,本試劑盒可測定約100次。
訂購信息
產(chǎn)品名稱(chēng) | 貨號 | 規格 |
活性氧(ROS)檢測試劑盒 | AC12L925 | 100T |
產(chǎn)品組分
組分 | 規格 |
A. DCFH-DA (10mM) | 0.1 mL |
B. 活性氧陽(yáng)性對照(Rosup, 50mg/mL) | 1 mL |
運輸與保存
藍冰運輸。-20℃避光保存,有效期12個(gè)月。
使用方法
一、裝載探針
刺激時(shí)間較短(通常為2 h以?xún)龋┑募毎合妊b載探針,后用活性氧陽(yáng)性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞。
刺激時(shí)間較長(cháng)(通常為6 h以上)的細胞:先用活性氧陽(yáng)性對照或自己感興趣的藥物刺激細胞,后裝載探針。
1. 原位裝載探針(僅適用于貼壁細胞)
(1) 細胞準備:檢測前一天進(jìn)行細胞鋪板,確保檢測時(shí)細胞匯合度達到50~70%?!咀ⅰ浚罕仨毐WC細胞狀態(tài)健康,且檢測時(shí)不會(huì )過(guò)度生長(cháng)。
(2) 探針準備:探針裝載前按照1:1000 用無(wú)血清培養液稀釋DCFH-DA,使其終濃度為10 μM。
(3) 探針裝載:吸除細胞培養液,加入適當體積稀釋好的DCFH-DA 工作液。加入的體積以能充分蓋住細胞為宜,【例】:6 孔板通常不少于1000 μL;96 孔板通常不少于100 μL。37℃細胞培養箱內避光孵育20~30 min。
(4) 細胞清洗:用無(wú)血清培養液洗滌細胞3 次,以充分去除未進(jìn)入細胞內的DCFH-DA。
(5) 藥物誘導:加入適量經(jīng)合適的緩沖液或無(wú)血清培養基稀釋到工作濃度的藥物,于37℃細胞培養箱內避光孵育,具體誘導時(shí)間根據藥物本身特性,以及細胞類(lèi)型來(lái)決定。
(5)(可選)陽(yáng)性對照:先用無(wú)血清培養基等1:1000 稀釋陽(yáng)性對照(Rosup, 50mg/ml)到常用工作濃度100 μg/ml,加入細胞,一般37℃避光孵育20~30 min 可顯著(zhù)看到活性氧水平提高,但依細胞類(lèi)型會(huì )有比較明顯差異。(如,HeLa 細胞孵育30 min;MRC5人胚胎成纖維細胞1.5 h)
2. 收集細胞后裝載探針(適用于貼壁細胞和懸浮細胞)
(1) 細胞準備:按照標準方法培養細胞,必須保證檢測用細胞狀態(tài)健康。按照適當方法,清洗并收集足量的細胞。
(2) 探針準備:探針裝載前,按照1:1000 用無(wú)血清培養液稀釋DCFH-DA,使其終濃度為10 μM。
(3) 探針裝載:細胞收集后懸浮于加入適當體積稀釋好的DCFH-DA 工作液,使其細胞密度為1.0×106~2.0×107/mL,37℃細胞培養箱內避光孵育20~30 min,每隔3-5 min 顛倒混勻一下,使探針和細胞充分接觸?!咀ⅰ浚杭毎芏刃韪鶕罄m的檢測體系,檢測方法,以及檢測總量來(lái)進(jìn)行調整?!纠浚簩τ诹魇椒治?,單管檢測內細胞數目不少于104,也不可多于106。
(4) 細胞清洗:用無(wú)血清培養液洗滌細胞3 次,以充分去除未進(jìn)入細胞內的DCFH-DA。
(5) 藥物誘導:將細胞懸浮于適量經(jīng)合適的緩沖液或無(wú)血清培養基稀釋到工作濃度的藥物中,或把細胞等分成若干份后進(jìn)行藥物刺激,于37℃細胞培養箱內避光孵育,具體誘導時(shí)間按藥物本身特性,以及細胞類(lèi)型來(lái)決定。
(5)(可選)陽(yáng)性對照:先用無(wú)血清培養基等1:1000 稀釋陽(yáng)性對照(Rosup, 50mg/ml)到常用工作濃度100 μg/ml,加入細胞,一般37℃避光孵育20~30 min 可顯著(zhù)看到活性氧水平提高,但依細胞類(lèi)型會(huì )有比較明顯差異。(如,HeLa 細胞孵育30 min;MRC5人胚胎成纖維細胞1.5 h)
二、檢測
原位裝載探針?lè )ǎ杭す夤簿劢癸@微鏡直接觀(guān)察,或收集細胞后用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測。
收集細胞后裝載探針:用熒光分光光度計、熒光酶標儀或流式細胞儀檢測,也可以用激光共聚焦顯微鏡直接觀(guān)察。
三、參數設置
使用488 nm 激發(fā)波長(cháng),525 nm 發(fā)射波長(cháng),實(shí)時(shí)或逐時(shí)間點(diǎn)檢測刺激前后熒光的強弱。DCF 的熒光光譜和FITC 非常相似,可以用FITC 的參數設置檢測DCF。DCF 的激發(fā)光譜和發(fā)射光譜參考下圖。
四、其他事項說(shuō)明
1. 陽(yáng)性對照Rosup通常按照1:1000的比例使用。通常刺激后20~30 min可以觀(guān)察到顯著(zhù)的活性氧水平升高。對于不同的細胞,活性氧陽(yáng)性對照的效果可能有較大的差別。如果在刺激后30 min內觀(guān)察不到活性氧的升高,可延長(cháng)誘導時(shí)間或適當提高活性氧陽(yáng)性對照的濃度。如果活性氧升高得過(guò)快,可縮短誘導時(shí)間或適當降低活性氧陽(yáng)性對照的濃度。
2. 對于某些細胞,若沒(méi)有刺激的陰性對照細胞熒光也比較強,可以按照1:2000~1:5000稀釋DCFH-DA,使裝載探針時(shí)DCFH-DA 的濃度為2~5 μM。探針裝載的時(shí)間也可以根據情況在15~60 min內適當進(jìn)行調整。
3. 活性氧陽(yáng)性對照(Rosup)僅僅用于作為陽(yáng)性對照的樣品,并不是在每個(gè)樣品中都需加入活性氧陽(yáng)性對照。
注意事項
1. 本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實(shí)驗研究使用,不得用于臨床診斷、治療等領(lǐng)域。
2. 探針裝載后,一定要洗凈殘余的未進(jìn)入細胞內的探針,否則會(huì )導致背景較高。
3. 探針裝載完畢并洗凈殘余探針后,可以進(jìn)行激發(fā)波長(cháng)的掃描和發(fā)射波長(cháng)的掃描,以確認探針的裝載情況是否良好。DCF 的激發(fā)光譜和發(fā)射光譜請參考上頁(yè)圖譜。
4. 盡量縮短探針裝載后到測定所用的時(shí)間(刺激時(shí)間除外),以減少各種可能的誤差。
本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實(shí)驗研究使用,不得用于臨床診斷、治療等領(lǐng)域。
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