《Quick Cell快速支原體檢測試劑盒》主要用于檢測細胞培養上清或別的液體樣品(如血清)中是否含有支原體污染,該試劑盒僅用于基礎科研。
哺乳動(dòng)物細胞的培養,支原體(Mycoplasma)污染是個(gè)世界性的問(wèn)題。支原體污染幾乎可以改變細胞的所有參數,導致實(shí)驗結果的不準確、甚至*錯誤。從2013年開(kāi)始,《Nature》期刊已正式要求投稿的文章,如涉及細胞培養都要進(jìn)行支原體檢測。本試劑盒可以檢測:(1)M.Hyorhinis、(2)M.Fermentans、(3)M.Arginini、(4)M. hominis、(5)M. orale、(6)M. salivarium、(7)M.pirum、(8)Acholeplasma Laidlawii、(9)M. agalactiae、(10)M.bovis、(11)M. buccale、(12)M. arthritidis、(13)M. pulmonis等幾乎所有常見(jiàn)的污染細胞的支原體(注:M.為Mycoplasma的縮寫(xiě))。以上13種支原體約占細胞支原體污染的99%以上,本試劑盒產(chǎn)品全部可以檢測。絕大多數支原體污染集中于前8種。注意:本試劑盒無(wú)法檢測Ureaplasma Urealyticum支原體!Ureaplasma Urealyticum在支原體污染種極其罕見(jiàn)。
與PCR法檢測支原體比較,本試劑盒產(chǎn)品優(yōu)勢優(yōu)勢顯著(zhù):
比較內容 | 支原體檢測PCR法 | Quick Cell 快速支原體檢測試劑盒 |
操作時(shí)間 | 3小時(shí) | 1小時(shí) |
是否需要樣品處理 | 樣品需預處理,DNA提取 | 無(wú)需樣品處理,直接使用上清 |
靈敏度 | 靈敏度低 | 較PCR法提高1000倍 |
是否需要電泳 | 需要電泳及染色 | 不需電泳,目測結果 |
試劑盒組成
(1)溶液Ⅰ:1150 μL (50次檢測)
(2)溶液Ⅱ:50 μL(50次檢測)
(3)溶液Ⅲ:指示劑,50 μL(50次檢測)
(4)陽(yáng)性支原體DNA:50 μL
(5)礦物油:1500 μL
使用方法
1. 待測樣品的準備:為了準確判斷細胞是否有支原體的污染,待測的細胞培養液樣品來(lái)源于至少培養三天且匯合度在70-90%左右的細胞培養上清(貼壁細胞),無(wú)需離心。懸浮培養的細胞也需要在換液傳代后,至少讓細胞生長(cháng)3天再取培養液進(jìn)行檢測,也無(wú)需離心。哺乳動(dòng)物細胞的存在不會(huì )影響檢測結果。
注:收集的待測細胞培養液樣品如果不立即檢測,請放于-20℃或-80℃冰箱保存,不得放于室溫或4℃冰箱。樣品在-20℃至少可以保存一個(gè)月,在-80℃可以長(cháng)期保存。此外,為了節約檢測成本,可以將不同時(shí)間收集的樣品放于-20℃或-80℃冰箱保存,而后一起檢測。
2. 反應體系的配制
表1:恒溫反應體系的配制
組 份 | 理論單個(gè)樣品用量 | 樣品總數 | 總體積 |
溶液Ⅰ | 23 μL | N | 23×N×1.08 μL |
溶液Ⅱ | 1 μL | N | 1×N×1.08 μL |
溶液Ⅲ | 0.18 μL | N | 0.18×N×1.08 μL |
(1)將溶液Ⅰ、溶液Ⅲ從-20℃冰箱中取出,待其融化后(可在37 ℃ 水浴內放置5-10分鐘以幫助融化),從-20℃冰箱中取出溶液Ⅱ置于冰上。吹吸均勻后,按表1比例,混合溶液Ⅰ、溶液Ⅱ、溶液Ⅲ。如有多個(gè)樣品,為了防止移液誤差,建議溶液Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ用量乘以系數1.08,保證每個(gè)反應管中的反應液足量。從配液開(kāi)始的所有步驟,均在冰上操作。
舉例:如果待測樣品為3個(gè)(加上1個(gè)陰性和1個(gè)陽(yáng)性對照),則樣品總數為5個(gè)。溶液Ⅰ的總體積為23×5×1.08=124.2μL,溶液Ⅱ的總體積為1×5×1.08=5.4μL,溶液Ⅲ的總體積為0.18×5×1.08=0.972 μL將溶液Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ混合均勻。
注:溶液Ⅱ必須一直在-20 ℃冰箱中保存,并在操作時(shí)置于冰上。溶液Ⅱ即使在-20 ℃條件下仍為液態(tài),不需置于室溫。
(2)將上述配制好的反應體系,吹打均勻后,按每管24 μL分裝到0.2 mL的PCR管中。盡量保證每管的反應液體積一樣。 PCR管應該使用透明度良好的薄壁PCR管。
(3)往測試管(Test)中加入1μL待測細胞培養液;往陽(yáng)性對照管(Positive)中加入1 μL陽(yáng)性支原體DNA;往陰性對照管(Negative)中加入1μL滅菌水;反應液的總體積為25 μL。
注1:裝有陽(yáng)性支原體DNA的螺口管開(kāi)蓋之前,用力甩一下,或者用迷你離心機即可。
注2:進(jìn)行反應體系配制的房間,與進(jìn)行樣品前處理、加陽(yáng)性對照DNA、樣品DNA的房間分開(kāi)。
3. 反應
PCR儀設置程序:61℃,60 min;10℃, forever;熱蓋溫度,100 ℃。
注意:若實(shí)驗室反應場(chǎng)所沒(méi)有PCR儀,可用水浴鍋代替,水浴鍋顯示溫度與實(shí)際溫度的溫差不超過(guò)0.5℃,另須往每個(gè)反應管內加入25μL礦物油,以防止水份揮發(fā),然后蓋上蓋子,將反應管插入帶孔的漂板內,放入已經(jīng)升溫到61℃的水浴內,準確反應60分鐘。
4. 結果判斷
61℃反應60分鐘后,立刻取出反應管,放于室溫。以一張白紙或白色泡沫盒為背景,通過(guò)反應管溶液顏色的變化,即可判斷檢測結果。如果溶液為藍綠色,則說(shuō)明有支原體污染;如果為紫紅色,則說(shuō)明沒(méi)有支原體污染(如圖1)。
注:在61℃反應的時(shí)間必須準確計時(shí),zui多不得超過(guò)5分鐘,以免出現假陽(yáng)性。必須在反應后2小時(shí)內進(jìn)行結果判斷,避免室溫下擴增反應進(jìn)行,影響結果判別。
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