脂質(zhì)過氧化是脂類的氧化降解過程,其主要由活性氧類(ROS)引發(fā)。脂質(zhì)過氧化傳感器(Lipid Peroxidation Sensor)是通過一種 C11-BODIPY 581/591 試劑的氧化來檢測活細胞中的脂質(zhì)過氧化情況。 C11 BODIPY 581/591 本質(zhì)上是一種親脂熒光染料,具有良好的光穩(wěn)定性、低熒光偽影特質(zhì),能積累在膜內(nèi)。 一旦染料的多不飽和丁間二烯基被氧化,熒光最大發(fā)射波長峰值從約 ~590 nm 偏移至約 ~510 nm,活細 胞的熒光從紅色變?yōu)榫G色,但仍維持親脂性,從而反映膜的脂質(zhì)過氧化水平。這種傳感器通常用于熒光顯 微鏡和流式細胞分析中,可視化監(jiān)測脂質(zhì) ROS 的生成和動態(tài)變化。
測定原理
LPO在酸性條件下加熱,產(chǎn)生小分子終產(chǎn)物 MDA,MDA與TBA,生成紅色產(chǎn)物,在 535nm有最大吸收峰。
使用方法
1. 流式細胞分析:
(1) 懸浮細胞:800 g 離心5 min 收集細胞沉淀;隨后PBS 洗滌細胞兩遍。
(2) 貼壁細胞:棄培養(yǎng)液,用常溫PBS 或培養(yǎng)液輕洗細胞2 次,隨后胰酶消化,800g 離心5 min 收集細胞沉淀,隨后PBS 洗滌細胞兩遍,每個樣本收集1~5 ×105 個細胞。【注】:操作過程中輕柔吹打細胞,消化時間不宜過長,劇烈吹打或胰酶消化過度會影響實驗結(jié)果。
(3) 脂質(zhì)過氧化傳感器用于脂質(zhì)過氧化檢測的推薦濃度為終濃度5μM;配制方法:用新鮮空白培養(yǎng)液配制終濃度為5μM 的脂質(zhì)過氧化傳感器染色液待用,DMSO 含量≤5‰?!咀ⅰ浚涸摬讲僮鹘ㄗh在消化細胞前準(zhǔn)備好,以免細胞消化后久置影響實驗結(jié)果。
(4) 將事先配置好的脂質(zhì)過氧化染色液加入收集的細胞沉淀中,推薦體積為500μL,隨后置于37℃孵箱,染色30min,期間5-10min 間隔輕彈細胞使其懸浮保證染色更充分。
(5) 染色結(jié)束后,800 g 離心5 min,棄上清,隨后用PBS 清洗細胞2 次,加入200μLPBS 重懸細胞用于流式分析。
2. 原位成像:
(1) 接種適當(dāng)密度的細胞于20mm 規(guī)格的蓋玻片上(也可用共聚焦小皿替代),給予實驗藥物處理適當(dāng)時
(1)間后,吸去培養(yǎng)液,用PBS 洗滌細胞一遍;加入500 μL 配制好的脂質(zhì)過氧化染色液,于37℃染色30min;配制方法參考流式分析中的染色液配制。
(2) 棄培養(yǎng)液,PBS 洗滌細胞兩遍后于熒光顯微鏡或激光共聚焦下進行成像檢測。細胞在染色后應(yīng)在1 h
(2)之內(nèi)完成檢測。
檢測條件
該分子探針在還原狀態(tài)下最佳激發(fā)波長為 581 nm, 發(fā)射為 591nm;被 Lipid ROS 氧化后最佳激發(fā)波長 為 500 nm,發(fā)射在 510nm。因此,在流式分析中檢測通道為 FL1-A;激光共聚焦檢測:氧化態(tài)激發(fā)波長可 選 488nm(FITC)通道;還原態(tài)激發(fā)波長可選 561 nm(TRITC)通道。
注意事項
1、臨用前注意試劑二是否溶解,如未溶解,可以 70℃-90℃加熱,并振蕩以促進溶解。
2、使用前小心離心數(shù)秒取用,需佩戴手套操作,注意避免與皮膚、眼睛和黏膜接觸。
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